中华人民共和国进出口商品检验行业标准 中华人民共和国进出口商品检验行业标准 　　　出口食品副溶血性弧菌检验方法 SN 0173?92 Method for 
detection of Vibrio 代替ZB X04 002?86 parahaemolyticus in food for export 
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1　主题内容与适用范围　　本标准规定了海产食品中副溶血性弧菌检验方法。　　本标准适用于海产食品中副溶血性弧菌检验,其他食品可参照使用。 2　设备与材料 2.1 
试管:17mm×170mm、15mm×150mm、10mm×100mm。 2.2 吸管:1mL、10mL。 2.3　培养皿:直径90mm。 
2.4　广口瓶或三角瓶。 2.5　电动均质器。 2.6　电动试管振荡器。 2.7 37℃恒温箱。 2.8 42℃恒温水浴箱。 2.9　试管架。 3　培养基及试剂 
3.1 30g/L氯化钠稀释液:见9.1。 3.2 60g/L氯化钠蛋白胨水(PW):见9.2。 3.3　氯化钠多粘菌素B肉汤(SPB):见9.3。 
3.4　硫代硫酸钠、柠檬酸钠、胆盐、蔗糖琼脂(TCBS):见9.4。 3.5　氯化钠三糖铁琼脂(TSI):见9.5。 
3.6　嗜盐性试验用胰胨水(TB):见9.6。 3.7　胰胨大豆琼脂斜面(TSA):见9.7。 3.8　靛基质试验用培养基(I):见9.8。 
3.9　氨基酸试验用培养基:见9.9。 3.10 V-P半固体琼脂(VP):见9.10。 3.11 糖类分解试验用培养基:见9.11。 
3.12　42℃生长试验用培养基:见9.12。 3.13　O/F试验用培养基(HLGB):见9.13。 3.14 
神奈川现象试验用我妻氏琼脂(WA):见9.14。 4　样品制备 4.1　冷冻样品应在45℃以下不超过15min或在2～5℃不超过18 h解冻。若不能及时检验, 
应放于?15℃左右保存；非冷冻而易腐的样品应尽可能及时检验,若不能及时检验,应置于6～10℃冰箱保存,在24 h内检验。 4.2　取样:以无菌操作进行。 
4.2.1 鱼类:取鱼体不同部位。 
4.2.2　贝类:取内脏或含内脏的全部贝肉；如为带壳贝类,则应先在清洁的流水中洗刷净外壳,然后以无菌操作打开贝壳,取出内脏或含内脏的全部贝肉和贝液。 
4.2.3　甲壳类:取包括鳃及肠的部分或整体。 4.3　以无菌操作称取50 g检样放于均质杯中,以灭菌剪刀充分剪碎。 4.4　加30 
g/L氯化钠稀释水450mL,均质(8 000 
r/min)1min,使成1:10稀释液(如无均质器,则应以剪刀尽量剪碎,加450mL稀释水使成1:10稀释液,并充分振荡)。 
4.5　用1mL灭菌吸管吸取1:10稀释液1mL,注入装有9mL30 g/L氯化钠稀释水的试管内,振摇试管混合均匀,制成1:100稀释液。 
4.6　每一稀释度换取1支1 mL灭菌吸管,按上项操作顺序进行10倍递增稀释。稀释倍数要依据有关标准、规定、要求或样品污染情况而定。 5　增菌培养和分离 
5.1　对新鲜样品,可选择3个连续适宜的稀释度,分别以1mL无菌吸管各吸取1mL稀释液, 
接种10mL单料氯化钠多粘菌素B肉汤中,进行选择性增菌培养,每一稀释度接种3 管(若选择的稀释度为接种1g样品时,则应以10mL灭菌吸管吸取1:10稀释液10 
mL,接种10 mL双料氯化钠多粘菌素B肉汤中)。　　对经加热、辐射处理或冷藏、冻结的样品,可按以上操作先将样品接种于60 
g/L氯化钠蛋白胨水于37℃前增菌18～24h,然后将培养物以接种环转种到氯化钠多粘菌素B肉汤中进行选择性增菌。 5.2 37℃培养18～24 h。 
5.3　氯化钠多粘菌素B肉汤管如有菌生长,则以3 mm直径接种环分别取一环菌液,划线于硫代硫酸钠、柠檬酸钠、胆盐、蔗糖琼脂(TCBS)平板上。 5.4 
37℃培养18～24 h。 
5.5　副溶血性弧菌在蔗糖琼脂(TCBS)平板上的典型菌落呈圆形,边缘整齐、湿润、稍混浊、半透明,多数具尖心、斗笠状,蓝绿色菌落,直径2～4mm。 6　生化鉴定 
6.1　在蔗糖琼脂(TCBS)平板上如出现典型或可疑菌落,每个平板至少挑取两个菌落,每个菌落分别顺次接种到下列培养基进行鉴别试验。 6.1.1　无盐胰胨水。 
6.1.2 30g/L氯化钠胰胨水。 6.1.3　氯化钠三糖铁琼脂:先穿刺后划线。 6.2 37℃培养18～24 h。 
6.3　选取在氯化钠三糖铁斜面上产碱,在底层产酸,不产气,不产硫化氢；在无盐胰胨水中几乎不生长,在30 
g/L氯化钠胰胨水中生长旺盛的菌株进行革兰氏染色、镜检,副溶血性弧菌为革兰氏阴性,呈棒状、弧状、卵圆状等多形态,两端浓染、无芽胞。如符合, 
继续进行以下生化鉴定。 6.3.1　嗜盐性试验:各取一环30g/L氯化钠胰胨水培养物,分别接种到70g/L及100g/L氯化钠胰胨水中,37℃培养18～24 
h。 6.3.2　细胞色素氧化酶试验:取一环30g/L氯化钠胰胨水培养物划线到胰胨大豆琼脂斜面上,37℃培养18～24 h。 
6.3.3　靛基质试验:在6.1.2的30 g/L氯化钠胰胨水培养物中加靛基质试剂后观察反应。 
6.3.4　赖氨酸脱羧酶试验:由氯化钠三糖铁斜面以接种针取少许培养物接种到赖氨酸试验用培养基中,37℃培养18～24 h。 
6.3.5　精氨酸双水解酶试验:按上项同样操作,将培养物接种到精氨酸试验用培养基中, 37℃培养18～24h。 6.3.6 
V-P试验:以接种针由氯化钠三糖铁斜面取少许培养物穿刺V-P半固体琼脂,37℃培养18～24h。在加V-P试剂前应先观察动力。沿穿刺线周围呈扩散性生长为动力阳性。 
6.4　副溶血性弧菌生化特性的判定及进一步试验如下。 6.4.1　如所分离的菌株符合表1特性,按第7章报告结果。 
表1　副溶血性弧菌的生化特性 ━━━━━━━━┳━━━━━━━━━━┳━━━━━━━━ 鉴定程序 ┃ 生 化 项 目 ┃ 反 应 
━━━━━━━━╋━━━━━━━━━━╋━━━━━━━━ ┃氯化钠三糖铁 ┃ ┃ 斜面 ┃ 产碱 ┃ 底层 ┃ 产酸,不产气 初 筛 ┃ 硫化氢 ┃ 阴性 
┃嗜盐性 ┃ ┃ 无盐胰胨水 ┃ 几乎不生长 ┃30 g/L氯化钠胰胨水 ┃ 生长旺盛 ━━━━━━━━╋━━━━━━━━━━╋━━━━━━━━ ┃70 
g/L氯化钠胰胨水 ┃ 明显生长 ┃100 g/L氯化钠胰胨水 ┃ 几乎不生长 ┃ 靛基质 ┃ 阳性 ┃ V-P ┃ 阴性 生化鉴别 ┃ 动力 ┃ 阳性 
┃细胞色素氧化酶 ┃ 阳性 ┃赖氨酸脱羧酶 ┃ 阳性 ┃精氨酸双水解酶 ┃ 阴性 ━━━━━━━━╋━━━━━━━━━━╋━━━━━━━━ ┃42℃生长 ┃ 
阳性 扩大生化鉴别┃蔗糖 ┃ 不分解 ┃O/F试验 ┃ 发酵型 ━━━━━━━━┻━━━━━━━━━━┻━━━━━━━ 6.4.2 
如表1生化项目(扩大生化试验项目除外)中,仅有一项生化试验不符合时,按以下步骤做进一步鉴定。 
6.4.2.1　蔗糖分解试验,42℃生长试验,O/F试验。如仍符合副溶血性弧菌特性,可按第 7章报告结果,如其中有一项不符合,即可排除。 
6.4.2.2　副溶血性弧菌与有关细菌的鉴别可参考表2进行。 　　　　　　　　表2　副溶血性弧菌与有关细菌鉴别表 
━━━━━━━━━━┳━━━┳━━━┳━━┳━━┳━━┳━━┳━━━┳━━━━ 　试　　验　 ┃副溶血┃溶藻胶┃鳗弧┃创伤┃河弧┃麦氏┃嗜水气┃类志贺邻 
┃性弧菌┃弧 菌┃ 菌 ┃弧菌┃ 菌 ┃弧菌┃单胞菌┃单胞菌 ━━━━━━━━━━╋━━━╋━━━╋━━╋━━╋━━╋━━╋━━━╋━━━━ 
TCBS(蓝绿色菌落) ┃ ＋ ┃ － ┃ － ┃ ＋ ┃ － ┃ － ┃ － ┃　＋ 42℃生长　 ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ － ┃ ┃ ｖ ┃ ｖ ┃ － 
┃　－盐耐受性试验(生长) ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ 0％氯化钠 　 ┃ － ┃ － ┃ － ┃ － ┃ － ┃ － ┃ ＋ ┃　＋ 60g/L氯化钠 　 
┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ － ┃　－ 80g/L氯化钠 　 ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ｖ ┃ － ┃ ＋ ┃ ｖ ┃ － ┃　－ 
100g/L氯化钠 　 ┃ － ┃ ＋ ┃ － ┃ － ┃ － ┃ － ┃ － ┃　－ 赖氨酸脱羧酶 　 ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ － ┃ ＋ ┃ － ┃ ｖ ┃ － 
┃　＋ 精氨酸双水解酶 ┃ － ┃ － ┃ ｖ ┃ － ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ｖ ┃　＋ 鸟氨酸脱羧酶 ┃ ＋ ┃ ｖ ┃ － ┃ ｖ ┃ － ┃ － ┃ － 
┃　ｖ 蔗糖发酵 ┃ － ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ － ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ｖ ┃　－ 乳糖发酵 　 ┃ － ┃ － ┃ － ┃ ＋ ┃ － ┃ ｖ ┃ ｖ ┃　ｖ 
甘露醇发醇 ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ｖ ┃ ＋ ┃ ＋ ┃ ＋ ┃　－ 阿拉伯糖发酵 ┃ ＋ ┃ － ┃ － ┃ － ┃ ＋ ┃ － ┃ ｖ ┃　－ 
V-P试验 　 ┃ － ┃ ＋ ┃ ｖ ┃ － ┃ － ┃ ＋ ┃ ｖ ┃　－ ━━━━━━━━━━┻━━━┻━━━┻━━┻━━┻━━┻━━┻━━━┻━━━━ 
注:空白处表示未试验；ｖ表示可变的。 7　报告结果　　生化试验符合副溶血性弧菌特性的菌株,按增菌培养阳性管数,应用表3(3管法),查出每100 
g样品中的副溶血性弧菌MPN值。检验结果报告为每100g样品中副溶血性弧菌的最近似值为××个。　　　　　　　　　　表3　每克样品中的最近似值(3管法MPN) 
━━━━━━━━━━━━┳━━━━┳━━━━━━━━━━━━━━┳━━━━ 阳性管数 ┃　　　　┃　 阳性管数 ┃ ━━━┳━━━━┳━━━┫ MPN 
┣━━━━┳━━━━┳━━━━┫　MPN 0.1　┃ 0.01 ┃ 0.001┃ ┃ 0.1 ┃ 0.01 ┃　0.001 ┃ 
━━━╋━━━━╋━━━╋━━━━╋━━━━╋━━━━╋━━━━╋━━━━ 0 　┃ 0 ┃ 0 ┃ ＜3 ┃ 0 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 13 0 　┃ 0 ┃ 
1 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 16 0 　┃ 0 ┃ 2 ┃ 6 ┃ 0 ┃ 3 ┃ 3 ┃ 19 0 　┃ 0 ┃ 3 ┃ 9 ┃ 1 ┃ 0 ┃ 
0 ┃ 3.6 0 　┃ 1 ┃ 0 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 0 ┃ 1 ┃ 7.2 0 　┃ 1 ┃ 1 ┃ 6.1 ┃ 1 ┃ 0 ┃ 2 ┃ 11 0 　┃ 
1 ┃ 2 ┃ 9.2 ┃ 1 ┃ 0 ┃ 3 ┃ 15 0 　┃ 1 ┃ 3 ┃ 12 ┃ 1 ┃ 1 ┃ 0 ┃ 7.3 0 　┃ 2 ┃ 0 ┃ 6.2 
┃ 1 ┃ 1 ┃ 1 ┃ 11 0 　┃ 2 ┃ 1 ┃ 9.3 ┃ 1 ┃ 1 ┃ 2 ┃ 15 0 　┃ 2 ┃ 2 ┃ 12 ┃ 1 ┃ 1 ┃ 3 ┃ 
19 0 　┃ 2 ┃ 3 ┃ 16 ┃ 1 ┃ 2 ┃ 0 ┃ 11 0 　┃ 3 ┃ 0 ┃ 9.4 ┃ 1 ┃ 2 ┃ 1 ┃ 15 
━━━╋━━━━╋━━━╋━━━━╋━━━━╋━━━━╋━━━━╋━━━━ 1 ┃ 2 ┃ 2 ┃ 20 ┃ 2 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 36 1 ┃ 2 ┃ 3 
┃ 24 ┃ 2 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 44 1 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 16 ┃ 2 ┃ 3 ┃ 3 ┃ 53 1 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 20 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 0 
┃ 23 1 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 24 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 1 ┃ 39 1 ┃ 3 ┃ 3 ┃ 29 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 2 ┃ 64 2 ┃ 0 ┃ 0 ┃ 
9.1 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 3 ┃ 95 2 ┃ 0 ┃ 1 ┃ 14 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 0 ┃ 43 2 ┃ 0 ┃ 2 ┃ 20 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 1 
┃ 75 2 ┃ 0 ┃ 3 ┃ 26 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 2 ┃ 120 2 ┃ 1 ┃ 0 ┃ 15 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 3 ┃ 160 2 ┃ 1 ┃ 1 
┃ 20 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 0 ┃ 93 2 ┃ 1 ┃ 2 ┃ 27 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 1 ┃ 150 2 ┃ 1 ┃ 3 ┃ 34 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 
2 ┃ 210 2 ┃ 2 ┃ 0 ┃ 21 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 3 ┃ 290 2 ┃ 2 ┃ 1 ┃ 28 ┃ 3 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 240 2 ┃ 2 
┃ 2 ┃ 35 ┃ 3 ┃ 3 ┃ 1 ┃ 460 2 ┃ 2 ┃ 3 ┃ 42 ┃ 3 ┃ 3 ┃ 2 ┃ 1100 2 ┃ 3 ┃ 0 ┃ 29 ┃ 3 
┃ 3 ┃ 3 ┃>1100 ━━━┻━━━━┻━━━┻━━━━┻━━━━┻━━━━┻━━━━┻━━━━ 
注:当报告每100g样品中副溶血性弧菌的最近似值时,可将查表所得数字乘以100。 8　神奈川现象及血清学实验(根据需要进行) 8.1　神奈川现象试验 
8.1.1　以接种环将30g/L氯化钠胰胨水培养物点种于充分干燥的我妻氏血琼脂平板上。可先在平板背面以玻璃铅笔划出若干小区,使一个平板能做多个试验。 8.1.2 
37℃培养18～24h。 8.1.3　在24 h以内观察结果,阳性结果在菌落周围有一清晰的透明环。 
8.2　血清学鉴定:副溶血性弧菌的抗原分为O、K、H三种。血清学分型以O及K抗原进行鉴定。 8.2.1 K 抗原凝集试验 
8.2.1.1　将经生化试验证实为副溶血性弧菌的菌株转种在两支30g/L氯化钠普通琼脂斜面上,37℃培养18 h。 8.2.1.2　以2mL 
20g/L氯化钠溶液洗下一支琼脂斜面培养物,制成浓厚菌悬液。 
8.2.1.3　先以K多价抗血清与菌悬液进行玻片凝集试验。在1min内观察反应。阳性凝集者,另进行自然凝集试验,若自然凝集试验为阴性,再以该K多价抗血清中的单因子K抗血清进行试验。 
8.2.1.4　与单因子K抗血清出现阳性凝集的,为该菌株的相应K抗原。 8.2.2　O抗原凝集试验 
8.2.2.1　以20g/L氯化钠〔含5％(V/V)甘油〕溶液洗另一支琼脂斜面培养物,将菌悬液经 121℃高压灭菌1 h。 
8.2.2.2　以离心沉淀法去上清液,再以20 g/L氯化钠溶液4000r/min离心15 min,洗两次沉淀后加0.5mL 2％氯化钠溶液制成浓厚的菌悬液。 
8.2.2.3 以已知K 抗原对应的O 群抗血清进行玻片凝集试验,同时以20 g/L氯化钠溶液代替抗血清做自然凝集对照试验。 
8.2.2.4　与抗血清出现强阳性凝集的,为该菌株的O抗原。 8.2.3　根据以上血清学试验结果,可报告为发现副溶血性弧菌O×K×血清型。 9　培养基及试剂 
9.1 30 g/L氯化钠稀释液　　氯化钠 30.0g 　　蒸馏水　 1000mL 　　加热溶解,调至pH7.0,121℃高压灭菌15 
min,以无菌操作分装于500mL广口瓶或500mL 三角瓶,每瓶450 mL以及17mm×170mm试管,每管9mL,做稀释样品用。 9.2 60 
g/L　氯化钠蛋白胨水(PW) 　　蛋白胨 10.0g 　　氯化钠 60.0g 　　蒸馏水　 1000mL 
将各成分加热溶解,调至pH7.2,分装于17mm×170mm试管,每管10mL。120℃高压灭菌15min。 9.3　氯化钠多粘菌素B肉汤(SPB) 
酵母浸膏　 3.0g 　　蛋白胨 10.0g 　　氯化钠 20.0g 　　多粘菌素B 250单位/毫升培养基　　蒸馏水　 1000mL 
将各成分(除多粘菌素B外)加热溶解,稍冷后加入多粘菌素B,调至pH7.4。分装于17mm 
×170mm试管,每管10mL。121℃高压灭菌15min。灭菌后,立即将培养基取出放凉。 9.4　硫代硫酸钠、柠檬酸钠、胆盐、蔗糖琼脂(TCBS) 
酵母浸膏　　 5.0g 　　蛋白胨 10.0g 　　氯化钠 10.0g 　　柠檬酸钠 10.0g 　　硫代硫酸钠 10.0g 
胆酸钠(以牛胆酸钠代替)　3.0g 　　牛胆汁粉(以混合胆盐代替)　5.0g 　　蔗　糖 20.0g 　　柠檬酸铁　 1.0g 　　琼　脂 18.0g 
溴麝香草酚蓝　0.04g 　　麝香草酚蓝　 0.04g 　　蒸馏水 1000mL 
除指示剂外,将各种成分加热溶解,调至pH8.6,加入指示剂。此培养基不必高压灭菌,煮沸1～2min,待培养基稍凉后倾注平板。　　在该平板上,溶藻胶弧菌为黄色菌落,而副溶血性弧菌为蓝绿色菌落。肠球菌、变形菌及大肠菌群有时也会生长,但其菌落一般较小,易与副溶血性弧菌区别。 
9.5　氯化钠三糖铁琼脂(TSI) 牛肉浸膏　　 3.0g 蛋白胨 20.0g 乳 糖 10.0g 蔗　糖 10.0g 葡萄糖　　　 1.0g 硫酸亚铁　　 
0.5g 硫代硫酸钠　 0.5g 氯化钠 30.0g 琼　脂 　　12.0g 酚　红　　　0.024g 
除琼脂和酚红外,将其他成分用蒸馏水400mL微火加热溶解,同时将琼脂置于600mL蒸馏水中,浸泡数分钟后,加热煮沸使完全溶解。然后将以上两液混合均匀。调至pH7.4, 
加入指示剂混匀,分装于15mm×150mm试管,每管3～4mL,115℃高压灭菌15min。灭菌后摆成斜面,使高层和斜面各约3cm。 
9.6　嗜盐性试验用胰胨水(TB) 　　胰　胨 40.0g 　　酵母浸膏 12.0g 　　蒸馏水　　 4000mL 
完全溶解后,分成4份,其中3份分别加入30g、70g、100g氯化钠,使成0％、30g/L、 
70g/L、100g/L不同浓度的氯化钠胰胨水。调至pH7.5。分装15mm×150mm试管,每管7mL。 121℃高压灭菌15min。 
9.7　胰胨大豆琼脂斜面(TSA) 　　胰　胨 15.0g 　　植物蛋白胨 　5.0g 　　氯化钠 30.0g 　琼　脂 15.0g 　　蒸馏水 1000mL 
将各成分加入水中,要不断搅拌,加热至煮沸1min。分装于15mm×150mm试管,每管 
3mL。121℃高压灭菌15min后制成斜面,最终pH7.3±0.2。 
试剂:10g/L盐酸四甲基对苯二胺水溶液　　　　　10g/Lα-萘酚乙醇溶液　　将配好后的10g/L盐酸四甲基对苯二胺溶液置于密塞棕色玻璃瓶中,于5～10℃存放。此试剂极易氧化,宜现用现配。试验时,取37℃18～24h的胰胨大豆琼脂斜面培养物1支。将两种试剂各2～3滴从斜面上端流下,2min内呈现蓝色者为细胞色素氧化酶试验阳性。 
9.8　靛基质试验用培养基(I) 　　培养基同9.6的30g/L氯化钠胰胨水。　　靛基质试剂〔柯凡克(KOVAS)氏试剂〕: 　　对二甲氨基苯甲醛 10.0g 
纯戊醇 150.0mL 浓盐酸　　　　　　　 60.0mL 
将试剂溶于戊醇中,然后慢慢加盐酸,加热至60℃后,呈深黄色,静置6～7h,变成黄色即可使用。试液宜小量配制,冰箱保存。久存后,试液变为黄褐色,不可继续使用。　　在30g/L氯化钠胰胨水18～24h培养液中,滴加柯凡克试液0.1mL。出现红色环者为阳性,出现黄棕色环者为阴性。 
9.9　氨基酸试验用培养基 9.9.1　赖氨酸脱羧酶培养基(LD) 　　酵母浸膏　 3.0g 　　葡萄糖　　 1.0g 　　氯化钠 30.0g 　　L-赖氨酸　 
5.0g 　　溴甲酚紫　 0.016g 　　蒸馏水　　 1000mL 
除溴甲酚紫外,将各成分加入蒸馏水中,搅拌均匀,静置约10min,加热至完全溶解,调至pH6.7±0.1。分装于10mm×100mm试管,每管1mL。121℃高压灭菌10min。灭菌后应立即取出放凉,接种培养后,培养基颜色变为深紫色的为阳性反应,变为黄色的,为阴性反应。 
9.9.2　精氨酸双水解酶试验用培养基(AD) 　　基础培养基同赖氨酸脱羧酶试验用培养基,精氨酸加入量同赖氨酸量。 9.10 V-P半固体琼脂(VP) 
酵母浸膏　 1.0g 　　蛋白胨 12.0g 　　葡萄糖 10.0g 　　氯化钠 30.0g 　　琼　脂 3.0g 　　蒸馏水 1000mL 
将各成分加入蒸馏水中,静置约10 min,搅拌、加热至溶解。调pH7.3±0.1,分装于 
10mm×100mm试管,每管1mL,121℃高压灭菌10min。灭菌后,立即取出放凉。　　V-P试剂: 　　甲液:α-萘粉　 6.0g 　　　　　纯乙醇 
100.0mL 　　乙液:氢氧化钾 40.0g 　　　　　肌　酸　 0.3g 　　　　蒸馏水 100.0mL 
先将氢氧化钾溶于水中,再加入肌酸。　　以上试剂保存于冰箱中,可使用两个月。试验时,分别加甲液0.2mL(约6滴)和乙液 
0.1mL(约3滴)。加入试剂后呈现红色者为阳性,铜色为阴性。对阴性结果1h后再做一次检查。 9.11 糖类分解试验用培养基　　蛋白胨 10.0g 
牛肉浸膏　 3.0g 　　氯化钠 30.0g 　　溴甲酚紫　 0.04g 　　蒸馏水　　 1000mL 
除溴甲酚紫外,将各成分加热溶解,按1％量加入糖类。调至pH7.0±0.2,加入溴甲酚紫。分装于10mm×100mm试管,每管1mL,112℃高压灭菌15min。 
9.12 42℃生长试验用培养基　　胰　胨 17.0g 　　大豆胨　　　 3.0g 　　氯化钠 30.0g 　　磷酸氢二钾　 2.5g 　　葡萄糖　　　 
2.5g 　　蒸馏水 1000mL 
除葡萄糖外,将各种成分混合溶解,煮沸1～2min,加入葡萄糖。调至pH7.3±0.2。分装于15mm×150mm试管,每管7mL,121℃高压灭菌15min。 
9.13 O/F试验用培养基(HLGB) 　　蛋白胨　　 2.0g 　　酵母浸膏　 0.5g 　　氯化钠 30.0g 　　葡萄糖 10.0g 　　溴甲酚紫　 
0.015g 　　琼　脂 3.0g 　　蒸馏水　　 1000mL 　　将各成分(除溴甲酚紫外)加于蒸馏水中加热溶解,调至pH7.4,加入溴甲酚紫,混匀, 
分装于15mm×150mm试管,每管3mL,121℃高压灭菌15min。 　 
本培养基用于鉴别革兰氏阴性细菌对于葡萄糖的发酵型和氧化型代谢作用。将同一菌株接种于2 
支该培养基中,其中一支管的培养基上面加灭菌矿物油脂来隔离氧气,而另一支管不加。这样发酵型细菌在两管培养基中均产生酸性反应,氧化型细菌则在未加矿物油脂的管中产生酸性反应,而在加油脂的培养管中只有轻度或者不生长也无反应变化。 
9.14 神奈川现象试验用我妻氏琼脂(WA) 　　酵母浸膏　　 3.0g 　　蛋白胨 10.0g 　　氯化钠 70.0g 　　磷酸氢二钾　 5.0g 　　甘露醇 
10.0g 　结晶紫　　　0.001g 　　琼　脂 15.0g 　　蒸馏水 1000mL 　　调至pH8.0(不必高压),加热30 
min,待冷至50℃,按5％的体积轻轻加入事先准备好的以生理盐水洗三次的新鲜人或兔血球。混合均匀倾注平皿,充分干燥后使用。　　注:新制备的培养基均应用已知阳性及阴性菌进行测试,以保证培养基质量。 
附 录 A 食品中副溶血性弧菌检验程序 (补充件) ┏━━━━━━━━━┓ ┃ 样品50g ┃ ┗━━━━┯━━━━┛ ↓ 
┏━━━━━━━━━━━━━━━━━┓ ┃ 450mL 30g/L氯化钠稀释液 ┃ ┗━━━━━━━━┯━━━━━━━━┛ 
│均质(8000r/min),1min ┌──────────┴─────────┐ ↓　 ↓ ┏━━━━━━━━━━━━━┓ ┏━━━━━━━━━━━━━━┓ 
┃ 60g/L氯化钠蛋白胨水3×3管┃ ┃ 氯化钠多粘菌素B肉汤3×3管 ┃ ┗━━━━━┯━━━━━━━┛ ┗━━━━━━┯━━━━━━━┛ ↓　 │ 
┏━━━━━━━━━━━━━┓ │ ┃ 氯化钠多粘菌素B肉汤 ┠─────────-───┤ ┗━━━━━━━━━━━━━┛ │ ↓ 
┏━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━┓ ┃硫代硫酸钠、柠檬酸钠、胆盐蔗糖琼脂平板　┃ 
┗━━━━━━━━━━━━┯━━━━━━━┛ │ ┌─────────┬──────────┴───┐ ↓　 ↓　 ↓ 
┏━━━━━━┓　┏━━━━━━━━━┓　　　　　┏━━━━━━┓ ┃ 无盐胰胨水 ┃ ┃30g/L氯化钠胰胨水 ┃ ┃ 氯化钠三 ┃ ┗━━━━━━┛ 
┗━━━━┯━━━━┛ ┃ 糖铁琼脂　┃ ↓　 ┗━━┯━━━┛ 　　　　　　　　　┏━━━━━━━━━━━━┓ │ ┃ 　　革兰氏染色镜检 ┃ │ 
┗━━━━━┯━━━━━━┛ │ ↓ │ 　　　　┌────┬────┬────┐ ┌───┼──┐ ↓ ↓　 ↓ ↓ ↓ ↓ ↓ 　　┏━━━┓ ┏━━━┓ 
┏━━┓ ┏━━┓ ┏━┓ ┏━┓ ┏━┓ ┃70g/L ┃ ┃100g/L┃ ┃ 细 ┃ ┃ 靛 ┃ ┃赖┃ ┃v ┃ ┃精┃ ┃ 氯 ┃ ┃ 氯 ┃ ┃ 胞 
┃ ┃ 基 ┃ ┃氨┃ ┃| ┃ ┃氨┃ ┃ 化 ┃ ┃ 化 ┃ ┃ 色 ┃ ┃ 质 ┃ ┃酸┃ ┃p ┃ ┃酸┃ ┃ 钠 ┃ ┃ 钠 ┃ ┃ 素 ┃ ┃ 试 
┃ ┃脱┃ ┃试┃ ┃双┃ ┃ 胰 ┃ ┃ 胰 ┃ ┃ 氧 ┃ ┃ 验 ┃ ┃羧┃ ┃验┃ ┃水┃ ┃ 胨 ┃ ┃ 胨 ┃ ┃ 化 ┃ ┃ ┃ ┃酶┃ ┃ ┃ 
┃解┃ ┃ 水 ┃ ┃ 水 ┃ ┃ 酶 ┃ ┃ ┃ ┃试┃ ┃ ┃ ┃酶┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ 试 ┃ ┃ ┃ ┃验┃ ┃ ┃ ┃试┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ 验 
┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃ ┃验┃ ┗━━━┛ ┗━━━┛ ┗━━┛ ┗━━┛ ┗━┛ ┗━┛ ┗━┛ 
如要求一定量样品中不得有副溶血性弧菌,则可将样品接种于9倍量的60g/L氯化钠蛋白胨水(前增菌)或多粘菌素B肉汤(直接增菌),以下操作按上列程序进行。 
━━━━━━━━━━━ 附加说明: 　本标准由中华人民共和国国家进出口商品检验局提出。 
本标准由中华人民共和国辽宁进出口商品检验局、天津进出口商品检验局负责起草。 　本标准主要起草人唐守亭、郝士海。 
━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━ 中华人民共和国国家进出口商品检验局1992-12-28批准 
1993-05-01实施